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297 人阅读发布时间:2025-09-10 13:54

细胞冻存液的分类主要依托成分构成与实际操作流程两大维度展开,不同类别的冻存液在细胞保护机制、适用场景范畴及操作规范标准上存在显著差异,需结合具体需求进行针对性选用。
成分是决定冻存液保护效果与使用安全性的核心要素,从这一维度可进一步细分为三类,分别依据保护剂渗透特性、是否添加血清、是否含有二甲基亚砜(DMSO)进行区分。
在细胞冻存过程中,低温环境易导致细胞内外冰晶生成、电解质浓度升高(即溶质损伤)及细胞脱水皱缩等问题,保护剂的核心作用便是针对性缓解这些损伤。根据能否穿透细胞膜进入细胞内部,保护剂可分为以下两类:
此类保护剂的核心特征为分子量小、脂溶性强,能在细胞冷冻凝固前快速渗透至细胞内部,其保护机制主要体现在两方面:① 降低细胞内外溶液的电解质浓度,避免高浓度电解质破坏细胞膜、细胞器等细胞结构;② 减少细胞内水分向外渗透,防止细胞因过度脱水皱缩,同时抑制细胞内外冰晶形成 —— 冰晶会对细胞膜造成物理性穿刺损伤。
常见的渗透性保护剂包括甘油、二甲基亚砜(DMSO)、乙二醇、乙--烯醇及乙酰胺等。其中,DMSO 是当前应用最广泛的类型:相较于渗透速度较慢的甘油、毒性相对较高的乙二醇,DMSO 渗透效率更高,保护效果也更稳定,因此成为常规冻存液的核心组成成分。

这类保护剂多为聚乙--烯吡--咯烷酮、蔗糖、葡聚糖、白蛋白、羟乙基淀粉(HES)等大分子物质,无法渗透进入细胞内部,其保护机制主要依赖 “间接作用”:① 优先与细胞外溶液中的水分子结合,减少 “自由水” 含量,降低溶液冰点,从而减少细胞外冰晶形成;② 通过稀释效应降低细胞外溶液的电解质浓度,间接减轻溶质对细胞的损伤;③ 部分大分子物质(如白蛋白)可在细胞膜表面形成 “保护膜”,减少细胞在冻存过程中遭受的机械损伤。
非渗透性保护剂通常与渗透性保护剂搭配使用(如血清中的白蛋白与 DMSO 组合),构建 “内外协同” 的保护体系,进一步提升细胞冻存效果。
血清是传统细胞培养中的重要营养补充成分,但因其动物源性属性,在部分应用场景中受到限制,基于这一特点,冻存液可分为以下两类:

传统冻存液多采用 “基础培养基 + 胎牛血清 + DMSO” 的混合体系(常规比例为培养基:血清:DMSO = 8:1:1,或在培养基:血清 = 9:1 的基础上添加 10% DMSO),血清的作用是模拟细胞天然生长环境,借助其含有的蛋白质、细胞因子等成分,增强细胞对低温环境的耐受能力。
不过,这类冻存液的局限性十分明显:① 动物源污染风险:血清来源于胎牛,可能携带病毒、霉菌、支原体等微生物,存在交叉污染隐患;② 批间稳定性差:不同批次血清的蛋白质含量、细胞因子种类等成分存在差异,导致冻存效果不稳定;③ 临床应用受限:在 CAR-T 细胞治疗等细胞治疗场景中,动物源性成分可能引发人体免疫排斥反应,且难以满足 “成分可预知、质量可控制” 的生产要求,因此逐渐被无血清冻存液替代。
此外,含血清冻存液需采用程序降温(4℃→-20℃→-80℃→液氮)的方式处理,原因是血清中大量蛋白质在快速降温过程中易发生沉淀,这些沉淀附着在细胞膜表面会导致细胞损伤。
这类冻存液以 “不含血清及动物源性蛋白质” 为核心特征,通过重组蛋白、化学定义的小分子物质等人工合成营养成分替代血清功能,其优势主要包括:① 消除动物源污染风险,符合细胞治疗的临床安全标准;② 成分明确、批间差异小,冻存效果稳定;③ 无需依赖血清提供营养补充,部分产品可适配干细胞、免疫细胞等更广泛的细胞类型。

DMSO 虽属于高效渗透性保护剂,但常温下对细胞的毒性限制了其在部分场景的应用,基于这一特性,冻存液可分为以下两类:
这类冻存液是目前实验室中最常用的类型(如 10% DMSO + 90% 含血清培养基),DMSO 的核心优势在于 “快速起效”—— 能在降温过程中迅速渗透至细胞内部,为非程序降温提供基础条件(部分改良型含 DMSO 冻存液可简化降温步骤)。
但其局限性也需重点关注:常温下对细胞具有毒性。相关研究数据显示,当培养液中 DMSO 浓度为 10% 时,细胞生长抑制率接近 100%;浓度降至 1% 时,抑制率仍达 35%;即便浓度低至 0.04%,也会对细胞的增殖、分化等功能产生不利影响。因此,细胞复苏后必须通过离心操作彻底去除 DMSO,否则会影响后续细胞活性。
在临床研究场景中,使用含 DMSO 冻存液还需额外评估两方面:① DMSO 的毒副作用是否会改变细胞的治疗功能(如免疫细胞的杀伤活性);② 最终产品中 DMSO 的残留量是否符合临床安全标准 —— 残留量过高可能引发患者恶心、呕吐等不良反应。
为解决 DMSO 的毒性问题,无 DMSO 冻存液的研发成为行业热点,其核心研发方向是寻找可替代 DMSO 的保护剂,主要分为 “渗透性替代物” 和 “非渗透性替代物” 两类。目前,渗透性小分子化合物(如部分糖醇类、酰胺类物质)被认为是更具应用前景的方向,这类物质的渗透效率接近 DMSO,且常温下毒性更低。
在细胞冻存进程里,降温速率堪称影响细胞活性的关键要素。降温速度倘若过快,极易促使冰晶生成;反之,若过慢,则容易引发细胞脱水现象。因此,操作流程的核心区别就在于 “是否需要程序降温”。
常规的含血清 + DMSO 冻存液大多归属于这一类别。其操作流程务必严格遵循 “梯度降温” 步骤:首先,将装有细胞的冻存管放置在 4℃冰箱中 10 分钟,此步骤旨在让细胞初步适应低温环境,实现初步降温;接着,转移至 -20℃冰箱中静置 30 分钟,借由缓慢降温来减少冰晶的形成;随后,再转移至 -80℃冰箱中存放 16 - 18 小时,使细胞代谢活动近乎停滞,完成深度降温;最终,转移至液氮罐(-196℃)中进行长期储存。
程序降温的核心目标在于适配含血清冻存液的成分特性,避免血清中的蛋白质发生沉淀,以及防止 DMSO 渗透不均而致使细胞受损。然而,该操作步骤繁杂、耗时较长,并且需要专人密切照看,以防遗漏某个降温步骤。
这类冻存液以 “一步深冻” 作为核心优势,主要涵盖改良型无血清冻存液、无 DMSO 冻存液。其成分设计独具匠心,例如采用高效保护剂组合、具备抗沉淀配方等,使其能够耐受快速降温。操作流程得以大幅简化,只需将细胞与冻存液混合后,直接放入 -80℃冰箱或者液氮中即可,无需执行梯度降温步骤。
其核心优势体现在能够节省时间、降低操作误差,无需专人看管,规避了因程序降温步骤出现失误(如在 -20℃停留时间过长)而导致细胞死亡的风险。尤其适用于大规模细胞冻存场景,比如临床细胞治疗中的批量细胞制备工作 。
选择细胞冻存液时,需综合考量细胞类型、应用场景(研究 / 临床)、操作成本等多方面因素,核心遵循以下五大原则,最终实现 “高存活率、低损伤、高安全性” 的冻存目标。
这是冻存液选型的首要原则 —— 冻存的核心目的是留存细胞活性,若细胞存活率过低(如低于 50%),后续的实验研究或临床治疗工作将难以推进。需根据细胞类型匹配适配的保护体系:例如,对二甲基亚砜(DMSO)敏感的神经细胞,应优先选用无 DMSO 冻存液;悬浮细胞(如免疫细胞)可选择无血清冻存液,避免血清中的黏附因子改变细胞形态;干细胞(如间充质干细胞)则需选用能维持其分化潜能的冻存液,防止因保护剂毒性导致干细胞分化能力丧失。
细胞复苏后的 “功能完整性” 与存活率同等关键 —— 即便细胞存活率较高,若细胞的形态、基因型、核心功能(如分泌因子能力、杀伤活性)发生改变,仍会造成实验结果偏差或临床治疗失效。例如,在临床 CAR-T 细胞冻存中,冻存液需确保 T 细胞的 CD3/CD8 阳性率、细胞因子(如 IL-2、IFN-γ)分泌能力不下降;在干细胞冻存中,需保证其多向分化潜能(如成骨、成脂分化能力)无明显变化。因此,选型时需参考厂家提供的 “细胞特性验证数据”,或通过预实验(如复苏后检测细胞表面标志物、功能指标)确认冻存液对细胞生物学特性的稳定性。
保护剂的 “后续影响” 是容易被忽略的关键要素:① 若保护剂难以去除(如部分大分子替代物),其残留会持续影响细胞活性;② 成分不明确(如含未知杂质的血清)可能引入干扰因素;③ 毒性过高(如部分 DMSO 替代物)会导致复苏后细胞功能异常。

即便选用了适配的冻存液,操作不当仍可能造成细胞损伤。实际应用中需重点关注以下三方面操作要点,以保障冻存效果与细胞活性。
常规冻存液(基础培养基 + 10% 血清 + 10% DMSO)的配制存在 “放热风险”——DMSO 溶解于培养基时会释放大量热量,若直接将其加入含细胞的培养液,高温会 “灼伤” 细胞,引发细胞膜破裂、细胞死亡。
正确操作方式如下:
提前配制控温:在无细胞的环境中,将 DMSO 缓慢加入基础培养基(或培养基与血清的混合液),边加边轻轻混匀,随后在室温下放置 1-2 小时平衡温度,待热量完全释放后再用于细胞冻存;
避免直接接触细胞:严禁将 DMSO 直接滴入细胞悬液,需先将配制好的冻存液与细胞悬液按比例(如 1:1 或 2:1,根据细胞浓度灵活调整)混合,确保细胞均匀接触冻存液,避免局部浓度过高或温度骤升损伤细胞。
选择无 DMSO 冻存液时,需规避 “仅追求无 DMSO 形式而忽视安全性” 的误区 —— 部分 DMSO 替代物(如某些高浓度糖醇类物质)的毒性可能高于 DMSO,盲目使用反而会降低细胞存活率。
关键验证步骤包括:
明确替代成分属性:通过厂家提供的说明书或相关文献,查询替代物的化学名称、毒性数据(如半数致死浓度 LC50),优先选择已有公开应用案例、安全性经实践验证的成分;
预实验对比验证:取少量目标细胞进行冻存 - 复苏预实验,将该无 DMSO 冻存液与常规含 DMSO 冻存液的细胞存活率、复苏后细胞功能(如增殖能力、特定生物学活性)进行对比,确认替代成分对细胞无明显负面影响后,再扩大应用范围。

无血清冻存液虽消除了血清带来的动物源污染风险,但仍可能在生产环节(如原料污染、分装环境洁净度不达标)引入微生物污染,其中支原体污染极具隐蔽性 —— 支原体无细胞壁,无法被常规抗生素抑制,且会附着于细胞表面,掠夺细胞营养并分泌毒性物质,导致细胞生长缓慢、功能异常(如干细胞分化能力下降、免疫细胞杀伤活性降低)。
必须开展的检测项目如下:
细菌 / 真菌污染检测:冻存前观察冻存液是否出现浑浊、沉淀、异味等异常现象,或通过无菌培养(如接种至 LB 培养基培养)确认无细菌、真菌生长;
支原体专项检测:采用标准检测方法(如 PCR 法、荧光染色法),对冻存液或复苏后的细胞进行支原体检测,确保结果为阴性。尤其是临床级冻存液,需严格符合《中华人民共和国药典》中 “生物制品支原体检查法” 的规范要求,保障临床应用安全。

结语
